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串聯(lián)質譜法同時測定人體尿液中4種有機磷農藥代謝物

點擊次數(shù):3704 發(fā)布時間:2016-07-12

1 引 言 
  繼有機氯農藥被禁用后,有機磷類農藥(Organophosphorus pesticides,OPs)成為國內目前農業(yè)生產上應用廣泛、使用量大的農藥[1]。OPs具有易降解、殺蟲效果好、抗性不顯著、殘效期較短的特點,除廣泛應用于農業(yè)生產中[2],還常作為除草劑應用于公園、綠地等公共場所。 
  OPs進入人體后代謝迅速,蓄積現(xiàn)象不明顯。OPs由于其結構的相似性,進入體內后一般都能代謝成為6種二烷基磷酸酯(DialkylPhosphates,DAP)代謝產物中的1種或幾種,在較短的時間內隨尿排出[3],主要有機磷農藥代謝產物見表1。除6種二烷基磷酸酯外,OPs還會產生特殊代謝產物,每種特殊代謝產物通常只由特定的1種或幾種OPs代謝產生,如毒死蜱、甲基毒死蜱的特殊代謝產物為3,5,6三氯2吡啶醇(3,5,6TCP),對硫磷、甲基對硫磷的特殊代謝產物為對硝基酚,馬拉硫磷的特殊代謝產物為馬拉硫磷二羥基酸[4]。 
  近年來,農藥暴露對人體健康的影響受到廣泛關注[6~9]。根據OPs代謝較快的特點,檢測人群尿液樣品中OPs非特異性及特異性代謝物含量可有效評估人體的OPs暴露水平。檢測尿液中OPs代謝物的方法主要有氣相色譜質譜聯(lián)用法[10~12]、氣相色譜串聯(lián)質譜法[13~15]、液相色譜串聯(lián)質譜法[16~18]。液相色譜串聯(lián)質譜法前處理較為簡單,但實際應用中靈敏度不高,且基質效應造成的離子抑制比較普遍[19]。提取尿液中DAPs的方法主要有液/液萃取[10~12,15~17]、固相萃取[13,20]、凍干法[14]。本研究采用固相萃取液/液萃取氣相色譜串聯(lián)質譜技術建立了人體尿液中3種OPs非特異性代謝產物及1種特殊代謝產物的高靈敏檢測方法,避免了液/液萃取使用yi醚對實驗室造成的安全隱患,實驗時間大幅縮短,凈化效率優(yōu)于凍干法。本方法為有機磷農藥的人體內暴露研究提供了良好的技術支撐。 
  2 實驗部分 
  2.1 儀器與試劑 
  Quattra micro GCMS/MS(美國Waters公司);AG285電子天平(瑞士Mettler公司); MG2200氮吹儀(日本EYELA公司);R210旋轉蒸發(fā)器(瑞士Buchi公司);WH3微型旋渦混合儀(上海楚定分析儀器有限公司,中國);Centrifuge C5804離心機、恒溫混勻儀(德國 Eppendorf公司);MilliQ純水器(美國Mimpore公司)。 
  乙腈、乙酸乙酯、甲苯(分析純,南京化學試劑有限公司);甲醇、甲酸(色譜純,德國Merck公司);N叔丁基二甲基甲硅烷基N甲基三氟乙酰胺(MTBSTFA,>97.0%,美國Aldrich公司)。 其它試劑均為國產分析純。 
  Waters Oasis WCX固相萃取柱(150 mg,6 mL)、Waters Oasis HLB固相萃取柱(200 mg,6 mL)、Waters Oasis WAX固相萃取柱(60 mg,3 mL),均購自美國Waters公司。 
  固相萃取DAPs:吸取尿液10.0 mL于100 mL具塞塑料離心管中,加入100 μL濃HCl,渦旋1 min,上樣于Waters Oasis WCX固相萃取柱(柱子提前用6 mL甲醇、6 mL水活化),通過固相萃取小柱的尿液樣品收集于100 mL塑料離心管中。上樣后,干燥,用8 mL 10%甲酸甲醇溶液洗脫,洗脫液置于10 mL具塞比色管中。 
  液/液萃取TCP:通過固相萃取小柱的尿液樣品中加入適量NaOH,使樣品pH≈7.0,加入2 g NaCl,渦旋至溶解,加入20 mL乙酸乙酯乙腈(70∶30, V/V),渦旋3 min,6000 r/min離心5 min。上清液經過含適量無水Na2SO4的漏斗轉移至雞心瓶中,旋蒸濃縮至2 mL左右。 
  用移液器將萃取濃縮液移出至含洗脫液的比色管中,40℃水浴中氮吹至*干燥,比色管中加入0.5 mL甲苯,渦旋1 min,轉移至1.5 mL玻璃小管中,加入10 μL 0.2 mg/L內標DBP,20 μL MTBSTFA,置于90℃恒溫混勻儀中衍生化30 min。 
  衍生化后的溶液冷卻至室溫,過0.22 μm有機相濾膜,供GCMS/MS分析。 
  2.3 氣相色譜條件 
  DB5MS色譜柱(30 m×0.25 mm×0.25 μm);程序升溫:60℃保持2 min,以5℃/min升至90℃,以12℃/min升至160℃,再以10℃/min升至280℃,保持2 min;進樣量1.0 μL;不分流進樣,載氣:氦氣(99.999%),流量:1.0 mL/min,進樣器溫度: 250℃。 
  2.4 質譜條件正離子模式的電噴霧電離ESI+,多反應離子監(jiān)測(MRM),TCP采用選擇離子檢測(SIM), EI源轟擊能:70 eV,離子源溫度:180℃,傳輸線溫度:250℃,溶劑延遲時間:5.0 min,碰撞氣:高純氬氣,保留時間定性,內標法定量。其它質譜參數(shù)見表2。 
  3 結果與討論 
  3.1 基質的選擇 
  選擇基質時,如采用人工合成尿液進行實驗,雖然本底較為干凈,干擾小,但人工尿液中不含蛋白質,與實際尿液有很大差距,不能有效反映人體實際尿液基質的復雜性。如采用單個個體尿液作為基質,有的個體存在較高的本底值,不適合測定方法的建立。因此,本實驗通過篩選不同個體的尿液,選擇本底干擾較小的人體尿液作為本實驗的基質。 
  3.2 前處理條件優(yōu)化 
  3.2.1 液/液萃取 文獻報道DAPs和TCP提取均采用液/液萃取的方法,故本實驗首先采用液/液萃取的方法提取DAPs和TCP。萃取溶劑見表3,結果見圖2。結果表明,采取液/液萃取法提取DAPs時,同一提取方案對不同代謝物提取回收率差別較大,很難找到平衡方案使各代謝物的回收率均符合要求,TCP的液/液萃取回收率較高。由于TCP的pKa=7.5,近中性,故萃取時將溶液調至pH ≈7,確保萃取時TCP的存在形式為分子態(tài)[18]。 
  3.2.2 固相萃取柱的選擇 
  目前文獻所報道的DAPs和TCP提取多采用液/液萃取法,固相萃取法的報道較少。本實驗分別考察了親水親油平衡柱(Waters Oasis HLB)、弱陽離子交換柱(Waters Oasis WCX)及弱陰離子交換柱(Waters Oasis WAX)對各代謝物的萃取效果,結果見圖3。 
  Waters Oasis HLB柱雖然適用范圍較廣,可從各種基質中分離出多種酸性、堿性和中性化合物,但DMTP回收率過高,其它物質則過低。Waters Oasis WAX柱為弱陰離子交換柱,適用于酸性物質, 具有高選擇性,DAPs為酸性(DMP pKa=1.25, DMTP pKa=1.37, DEP pKa=1.37, DETP pKa=1.49),但本實驗發(fā)現(xiàn)其對DMP、DEP基本沒有保留,對DMTP、DETP雖有保留,但回收率非常不穩(wěn)定,不適用于從尿液中提取DAPs,而TCP的pKa近中性,不易被WAX柱吸附。 
  Waters Oasis WCX柱對DMTP、DEP、DETP、TCP均有保留,且回收率較穩(wěn)定。Waters Oasis WCX柱為陽離子交換柱,可吸附帶正電的分子。DAPs的pKa較低,呈酸性,實驗中采用強酸酸化并不會使DAPs分子解離,而分子中的硫原子及氧原子含有孤對電子,吸引溶液中的氫質子,從而使DAPs分子質子化,帶正電荷,可被WCX柱吸附。DMP相比于其它的DAPs,由于極性較大,正電性較弱,在WCX柱上基本無保留。WCX柱對除DMP外的DAPs及TCP均有保留,故選其作為固相萃取柱,并對其洗脫條件進行優(yōu)化。 
  3.2.3 洗脫條件的優(yōu)化 在洗脫條件的優(yōu)化中,分別考察10%甲酸甲醇溶液、20%甲酸甲醇溶液、30%甲酸甲醇溶液,10%甲酸乙腈溶液的洗脫效果,結果見圖4。使用10%甲酸甲醇作為洗脫液時,各代謝物回收率在34.9%~77.5%之間(DMP基本無回收),高于20%甲酸甲醇溶液得到的回收率,且較30%甲酸甲醇溶液得到的回收率更為穩(wěn)定。10%甲酸乙腈溶液的洗脫效果與10%甲酸甲醇溶甲醇溶液相當,TCP基本無回收。隨著酸度增加,DAPs的回收率基本都是呈先降低再升高的趨勢。使用10%甲酸甲醇作為洗脫液,回收率可以接受,且較為穩(wěn)定。 
  3.3 固相萃取與液/液萃取的比較 
  采用表3中方案4作為液/液萃取方法,與優(yōu)化過的固相萃取方法進行回收率的比較,結果見圖5。 
  對于DMTP, DEP和DETP,固相萃取的回收率和穩(wěn)定性均高于液/液萃取。對于生物基質樣品分析,方法的穩(wěn)定性十分重要。液/液萃取提取TCP的回收率和穩(wěn)定性優(yōu)于固相萃取。用何種提取方法DMP,結果均不能令人滿意。終采用固相萃取提取DMTP, DEP和DETP,采用表3中方案4提取TCP。 
  3.4 衍生化反應 
  本實驗采用硅烷化試劑N(叔丁基二甲基硅烷基)N甲基三氟乙酰胺(MTBSTFA)對目標化合物進行衍生化反應。目標代謝物與衍生化試劑MTBSTFA的反應原理如圖6所示,通過硅烷化作用將叔丁基二甲基硅烷基引入目標代謝物分子中,取代分子中的活性氫。 
  文獻[5,10,11,20,21]采用五氟溴芐苯(PFBBr)對DAPs進行衍生化,衍生化反應需加入適量K2CO3。與采用PFBBr相比,MTBSTFA的衍生化反應時間較短(PFBBr衍生化反應需16 h[21]),不需要其它試劑參與,不必考慮其它試劑的用量對衍生化效率的影響。 
  3.5 方法學驗證 
  3.5.1 標準曲線及線性范圍 向尿樣中添加目標代謝物混合標準溶液,按2.2節(jié)中前處理方法進行提取、凈化,在優(yōu)化后的色譜及質譜條件下進樣,繪制工作曲線,記錄各待測物色譜峰面積(As)與內標色譜峰面積(Ar)。以各待測物與內標的峰面積比R (R= As/As)對濃度(C,mg/L)進行線性回歸,確定線性范圍及檢出限、定量限。檢出限和定量限分別以3和10倍信噪比的濃度來確定。DMP在固相萃取柱上基本無保留,其它代謝物制定工作曲線得到的線性方程相關系數(shù)均在0.9923~0.9942之間,表明各代謝物在相應的濃度范圍內線性關系良好, 結果見表4。 
  3.5.2 方法的回收率及精密度 由于無法獲得所分析的代謝物引入叔丁基二甲基硅烷基的標準品,衍生化反應效率無法確定,整個樣品制備過程的回收率無法考察。本研究按2.2節(jié)方法同時處理加標與未加標的基質,未加標基質在衍生化前加入等量標準溶液,由兩者響應的比值計算回收率,設置低、中、高3個添加濃度,結果見表5。生物體液樣本基質較為復雜,分析前需要經過衍生化反應,處理步驟較多,回收率低于基質單一的樣品。3.5.3 基質效應 采用提取后添加法評定基質效應。按照2.2節(jié)方法處理尿液基質,衍生化前加入標準品溶液,進樣后所得峰面積記為A組峰面積;純溶劑衍生化前加入標準品溶液,進樣后所得峰面積記為B組峰面積。以A組峰面積與B組峰面積的比值(A/B)考察基質效應,4種代謝物的基質效應在60%~176%之間,故采用基質加標工作曲線消除基質效應的影響。 
  3.6 氣相色譜質譜條件優(yōu)化 
  根據目前已有文獻報道,本研究嘗試了不同的升溫程序。優(yōu)化后的色譜圖見圖7,各物質峰形良好,分離效果。 
  代謝物衍生化后在EI源中主要的裂解方式見圖7,運用Daughter Scan模式,進行子離子掃描,并對碰撞能量進行優(yōu)化,以達到較高的靈敏度。3,5,6TCP在正離子檢測方式下,基峰為m/z 256,運用Daughter Scan模式,進行子離子掃描, 結果并未發(fā)現(xiàn)響應穩(wěn)定且較強的碎片峰,這與3,5,6TCP的環(huán)狀結構特點較為一致。 
  3.7 樣品分析 
  采集居住在農藥廠附近居民的晨尿樣品40份,其中兒童尿液樣品20份,成人尿液樣品20份,按2.2節(jié)中的實驗方法進行處理,測定結果見表6。 
  結果表明,成人尿液樣品DMTP, DEP, DETP, TCP檢出率分別為85%, 90%, 90%, 45%,兒童尿液樣品分別為35%, 75%, 65%, 60%。成人尿液中非特異性代謝物DMTP, DEP, DETP的檢出率均高于兒童,特異性代謝物TCP的檢出率低于兒童。結果表明,居住在農藥廠附近的成人與兒童均有不同程度的有機磷農藥內暴露,呼吸可能是造成有機磷農藥內暴露的重要途徑。以尿液中代謝物作為評估有機磷農藥暴露程度的指標,成人的暴露量大于兒童,這是由于成人的呼吸量較大, 且對農藥的代謝能力較強。不同成人與兒童尿液中有機磷代謝物檢出的差異與其住所位置、膳食結構等都有密切的關系。 
  4 結 論 
  建立了固相萃取氣相色譜串聯(lián)質譜同時分析制尿液中4種OPs代謝物的方法,定量檢測了人體尿液中4種代謝物含量。本研究采用WCX固相萃取柱,與液/液萃取相比,耗費的有機溶劑更少,耗時更短,適合于大批量樣品的前處理,為研究人群中低劑量OPs農藥暴露情況提供了方法學基礎。 

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